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聚乙二醇(PEG)为常用的多聚物，可与疏水性蛋白和脂质分子结合共沉淀，早先应用于从血清等样本中收集病毒，现在也被用来沉淀外泌体，其原理可能与竞争性结合游离水分子有关。利用PEG沉淀外泌体存在不少问题：比如纯度和回收率低，杂蛋白较多(假阳性)颗粒大小不均一，产生难以去除的聚合物，造血干细胞存储机械力或者 Tween-20等化学添加物将会破坏外泌体等,影响实验结果。
此处以某公司的产品为例，对其操作流程进行一个简单介绍：
实验前准备：由于FBS中含有丰富的外泌体，这将会给后续实验带来很大的污染，因此用48小时饥饿后的培养基上清，玻璃管,4℃，离心机,0.22um一次性滤器。
注意：饥饿细胞前要保证细胞状态良好，细胞状态直接关系到外泌体的产量。
1.收集4ml细胞培养上清。
2.3000×g,15分钟4℃离心或者0.22μm滤器过滤。
3.配制反应混合液(A:0.25ml；B:0.25ml；C：lml)，造血干细胞存储按照ABC的顺序加，将混合物剧烈震荡10秒后立即加入上一步准备的培养基上清中；注：使用玻璃管而不是塑料管。
4.剧烈震荡30秒之后冰上静置30分钟。
5.分层后快速去除顶层和底层，将云雾状层立刻转移到1.5mlEP管中，离心5000×g3分钟；其中顶层保留作为实验对照。
6.再次分层后去除顶层和底层，将云雾状层立刻转移到05m的EP管中，离心5000×g3分钟。
7.再次去除顶层和底层，开盖挥发10分钟；但不要让沉淀完全干燥。
8.加入4倍沉淀体积的1×PBS，造血干细胞存储用枪尖上下混匀40-60次后放在水平震荡仪上高速震荡10分钟，间隔3分钟上下吹吸40次（这一步非常关键，外泌体可能被包裹在沉淀中难以重悬，造成结果的产量低）。
9.5000×g,5分钟离心，上清过柱，沉淀4℃保留。
10.1000×g,10分钟，收集过柱后的液体即为产物。
